Aramigus tessellatus (Say)
Hembra, MLP. Morfotipo tessellatus.
Distribución geográfica
Distribución
Plaga ocasional de menor importancia
- Argentina
- Buenos Aires
- Chaco
- Córdoba
- Corrientes
- Entre Ríos
- Jujuy
- La Pampa
- Misiones
- Neuquén
- Río Negro
- Santa Fe
- Santiago del Estero
- Tucumán
- Uruguay
Otra distribución
BRASIL
Rio Grande do Sul, Santa Catarina, São Paulo
URUGUAY
Lavalleja, Maldonado, Paysandú
Introducida en Chile, México y USA.
Rio Grande do Sul, Santa Catarina, São Paulo
URUGUAY
Lavalleja, Maldonado, Paysandú
Introducida en Chile, México y USA.
- Liparus tessellatus Say 1824: 318
- Sitona durius Germar 1824: 417
- Aramigus tessellatus var. pallidus Horn 1876: 94
- Eurymetopus griseus Voss 1934: 63
- Eurymetopus chevrolati Voss 1934: 64
- Pantomorus biseriatus Hustache 1947: 117
- Asynonychus viridipallens Hustache 1947: 137
- Asynonychus santafecinus Lanteri in Lanteri et al. 1987: 181
Aramigus tessellatus es un complejo de especies con diversos linajes o morfotipos que se diferencian principalmente por caracteres morfométricos del pronoto, élitros, espermateca y conducto espermatecal (Lanteri & Díaz 1994). Estos morfotipos se reconocen también por datos moleculares del gen COI (Normark & Lanteri 1998).
Los morfotipos más frecuentes son tessellatus y pallidus, ambos introducidos en USA. Los morfotipos más diferentes son viridipallens (verde iridiscente, con élitros muy delgados y alargados) y biseriatus (con líneas de setas largas y erguidas a lo largo de los intervalos elitrales). Todos los morfotipos (excepto biseriatus) tienen distribución simpátrida en las sierras de Córdoba y Tandil (Buenos Aires), delta del Paraná y en el río de La Plata. Una clave para el reconocimiento de las especies de Aramigus y de los morfotipos de A. tessellatus se incluye en Lanteri & Díaz (1994).
Los machos son escasos o están ausentes y la especie se considera partenogenética en la mayor parte de su distribución (Lanteri & Normark 1995). Los morfotipos pallidus y tessellatus están infectados con la bacteria Wolbachia(Rodriguero et al. 2010a). El primer estadio larval de A. tessellatus fue descrito por Marvaldi & Loiácono (1994), y los huevos y tipo de oviposición por Marvaldi (1999).
Un análisis de modelado de nicho ecológico sugiere que Sudáfrica, el oeste de Australia y China son tienen condiciones adecuadas para el establecimiento de esta especie, además de los países en los que fue introducida (Lanteri et al. 2013b).
Los morfotipos más frecuentes son tessellatus y pallidus, ambos introducidos en USA. Los morfotipos más diferentes son viridipallens (verde iridiscente, con élitros muy delgados y alargados) y biseriatus (con líneas de setas largas y erguidas a lo largo de los intervalos elitrales). Todos los morfotipos (excepto biseriatus) tienen distribución simpátrida en las sierras de Córdoba y Tandil (Buenos Aires), delta del Paraná y en el río de La Plata. Una clave para el reconocimiento de las especies de Aramigus y de los morfotipos de A. tessellatus se incluye en Lanteri & Díaz (1994).
Los machos son escasos o están ausentes y la especie se considera partenogenética en la mayor parte de su distribución (Lanteri & Normark 1995). Los morfotipos pallidus y tessellatus están infectados con la bacteria Wolbachia(Rodriguero et al. 2010a). El primer estadio larval de A. tessellatus fue descrito por Marvaldi & Loiácono (1994), y los huevos y tipo de oviposición por Marvaldi (1999).
Un análisis de modelado de nicho ecológico sugiere que Sudáfrica, el oeste de Australia y China son tienen condiciones adecuadas para el establecimiento de esta especie, además de los países en los que fue introducida (Lanteri et al. 2013b).
Causa daños en Medicago sativa L. (Fabaceae) en Argentina, Chile y Uruguay (Alzugaray et al. 1998, Lanteri 1994); Helianthus annuus L. (Asteraceae), Solanum tuberosum L. (Solanaceae), Triticum aestivum L., Avena sativa L. y Hordeum vulgare L. (Poaceae) en Argentina (Lanteri et al. 2002a); Rubus idaeus L., Prunus avium L.,Malus domestica Borkh (Rosaceae) y Lupinus sp (Fabaceae) en Chile (Elgueta 1993).
Es frecuente en pasturas, matorrales y cultivos de la provincia biogeográfica Pampeana.
Es frecuente en pasturas, matorrales y cultivos de la provincia biogeográfica Pampeana.
- GERMAR E.F. 1824. Insectorum species novae aut minus cognitae, descriptionibus illustratae. Hendel and Sons, Halae. Vol. 1, Coleoptera, XXIV + 624 pp., illus. [Curc. pp. 185-461, pls. I-II].
- SAY T. 1824. Descriptions of Coleopterous insects collected in the late expedition to the Rocky Mountains, performed by arder of Mr. Calhoun, Secretary of War, under the command of Majar Long. Journal of the Academy of Natural Sciences of Philadelphia 3(2): 298-331 [Curc. pp 308-319].
- HORN G.H. 1876. In: LeConte J.L., Horn G.H. (eds). The Rhynchophora of America, north of Mexico. Proceedings of the American Philosophical Society 15(96): 1-455 [Horn, pp 13-112].
- VOSS E. 1934. Einige unbeschriebene Neotropische Curculioniden nebst einer Vorstudie zur Tribus Promecopini (Col. Curc.). 48. Beitrag zur Kenntnis der Curculioniden (Neotrop. Curc. II). Sborník Entomologického Oddeleni Národního Musea v Praze 12: 63-104.
- HUSTACHE A. 1947. Naupactini de l’Argentine et des régions limitrophes (Col. Curculion.). Revista de la Sociedad Entomológica Argentina 13(1-5): 3-146.
- LANTERI A.A. ET AL. 1987. Aplicación de técnicas numéricas al estudio sistemático del grupo de Asynonychus durius (Germar) (Coleoptera: Curculionidae). Entomologischen Arbeiten aus dem Museum G. Frey 35-36: 171-198.
- ELGUETA M. 1993. Las especies de Curculionoidea (Insecta: Coleoptera) de interés agrícola en Chile. Publicación Ocasional nro. 48, Museo Nacional de Historia Natural, Santiago, Chile, 72 pp.
- LANTERI A.A. 1994. Bases para el control integrado de los gorgojos de la alfalfa. De la Campana Ediciones, La Plata, 119 pp.
- LANTERI A.A. & DÍAZ N.B. 1994. Systematic study and cladistic analysis of the genus Aramigus Horn (Coleoptera: Curculionidae). Transactions of the American Entomological Society. 120(2): 113-144.
- MARVALDI A.E. & LOIÁCONO M.S. 1994. First instar larvae in the tribe Naupactini (Coleoptera, Curculionidae). Revista Brasileira de Entomologia 38(2): 453-466.
- LANTERI A.A. & NORMARK B.B. 1995. Parthenogenesis in the tribe Naupactini (Coleoptera: Curculionidae). Annals of the Entomological Society of America 88(6): 722-731.
- ALZUGARAY R. ET AL. 1998. Situación de los insectos del suelo en Uruguay. In: Morón, M.A., Aragón A. (eds.). Avances en el estudio de la diversidad, importancia y manejo de los Coleópteros edafícolas americanos. Publicación Especial, Universidad Nacional Autónoma de Puebla, Sociedad Mexicana de Entomología, pp. 151-164.
- NORMARK B.B. & LANTERI A.A. 1998. Incongruence between morphological and mitochondrial- DNA characters suggests hybrid origins of parthenogenetic weevil lineages (genus Aramigus). Systematic Biology 47(3): 475-494.
- MARVALDI A.E. 1999. Eggs and oviposition habits in Entimini (Coleoptera: Curculionidae). The Coleopterists Bulletin 53(2): 115-126.
- LANTERI A.A. ET AL. 2002a. Gorgojos de la Argentina y sus plantas huéspedes. Tomo I: Apionidae y Curculionidae. Publicación Especial de la Sociedad Entomológica Argentina Nº 1, 98 pp.
- RODRIGUERO M.S. ET AL. 2010a. Wolbachia infection in the tribe Naupactini: association between thelytokous parthenogenesis and infection status. Insect Molecular Biology 19(5): 599-705.
- LANTERI A.A. ET AL. 2013b. Potential geographic distributions and successful invasions of parthenogenetic broad-nosed weevils (Coleoptera: Curculionidae) native to South America. Environmental Entomology 42(4): 677-686.
